DOI: https://doi.org/10.18523/2617-4529.2018.13-20

Успадкування стійкості до борошнистої роси у інтрогресивних ліній Авротіки

Tamara Ternovska, Tetiana Iefimenko, Anastasiia Navalihina, Maksym Аntonyuk

Анотація


Результати вивчення частоти передання чужинної ознаки, стійкість до борошнистої роси, у гібридах від схрещування стійких до неї інтрогресивних ліній пшениці м’якої зі сприйнятливим рекуррентним генотипом показали значне відхилення емпіричного співвідношення обсягів фенотипних класів від очікуваного для домінантно-рецесивної моногенної ознаки. Встановлену при вивченні хромосомних конфігурацій у М1 мейозу МПК відсутність бівалентної кон’югації хромосом розглянуто як один із чинників спотворення емпіричного співвідношення проти очікуваного через формування анеуплоїдних гамет та зигот із різною життєздатністю. Запропоновано показник d, який кількісно характеризує ексцес гамет без чужинного хроматину. Оптимальною щодо її відповідності до емпіричних даних розщеплення визнано модель: функціонують усі жіночі та лише еуплоїдні чоловічі гамети, нулісомні зиготи нежиттєздатні, під час мейозу відбувається усунення його продуктів, що містять чужинний хроматин, з величиною d = 0,11–0,12.

Ключові слова


інтрогресивні лінії; трансмісія чужинного хроматину; спотворення розщеплення; анеуплоїдні гамети; життєздатність зигот; мейотичний драйв; борошниста роса

Повний текст:

PDF

Посилання


Ternovska T.K., Vdovichenko ZH.V. Dependence of results of genetic analysis of self-pollinating cereal species on the specificity of the mapping population. Tsitol Genet. 2003;37(3):67–79.

Motsnyy II, Omelchenko LI, Simonenko VK. Inheritance of qualitative traits in the hybridization of wheat whith a Triticum-Elymus amphiploid. Cytology and Genetics. 1997;31(1):20–31.

Whelan EDP. Transmission of an alien telocentric addition chromosome in common wheat that confers blue seed color. Genome. 1989;32(1): 30-4.

Friebe B, Mukai Y, Dhaliwal HS, Martin TJ, Gill BS. Identification of alien chromatin specifying resistance to wheat streak mosaic and greenbug in wheat germplasm by C-banding and in situ hybridization Theor Appl Genet. 1991; 81(3):381-9.

Linde-Laursen I, von Bothmer R. Orderly arrangement of the chromosomes within barley genomes of chromosome- eliminating Hordeum lechleri × barley hybrids. Genome. 1999;42:225–36.

Gernand D, Rutten T, Pickering R, Houben A. Elimination of chromosomes in Hordeum vulgare × H. bulbosum crosses at mitosis and interphase involves micronucleus formation and progressive heterochromatinization. Cytogenet Genome Res. 2006;114:169–74.

Maruthachalam R, Chan SWL. Haploid plants produced by centromere-mediated genome elimination. Nature. 2010;464:615–9.

Davies DR. Chromosome elimination in inter-specific hybrids. Hered. 1974;32:267–70.

Ishii T, Ueda T, Tanaka H, Tsujimoto H. Chromosome elimination by wide hybridization between triticeae or oat plant and pearl millet: pearl millet chromosome dynamics in hybrid embryo cells. Chromosome Res. 2010;18:821–31.

Komeda N, Chaudhary HK, Mukai Y. Cytological evidence for chromosome elimination in wheat × Imperata cylindrica hybrids. Genes Genet Syst. 2007;82:241–8.

Friebe B, Mukai Y, Dhaliwal HS, Martin TJ, Gill, B.S., Identification of alien chromatin specifying resistance to wheat streak mosaic and greenbug in wheat germplasm by C-banding and in situ hybridization. Theor Appl Genet. 1991; 81(3):381–389.

Iefimenko TS, Antonyuk MZ, Martynenko VS, Navalihina AG, Ternovska TK. Introgression of Aegilops mutica genes into common wheat genome. Cytol Genet. 2018; 52(1):21–30.

Zhang R, Murat F, Pont C, Langin Th, Salse J. Paleo-evolutionary plasticity of plant disease resistance genes. BMC Genomics. 2014;15:187.

Kihara H. Wheat studies. Retrospect and prospect. Tokyo, Kodansha LTD, 1982, 310 p.

Ternovska ТК, Antonyuk МZ, Shtefiuk ТV, Мartynenko VS. Non-canonical inheritance of powdery mildew resistance in common wheat introgressive lines. Factors in Experimental Evolution of Organisms, v.6. Kyiv: Logos; 2017, p. 41-6.

Zimmering S, Sandler L, Nicoletti B. Mechanisms of meiotic drive. Annu Rev Genet. 1970;4:406-436.

Lindholm AK, Dyer KA, Firman RC, Fishman L, Forstmeier W, Holman L.The ecology and evolutionary dynamics of meiotic drive. Trends Ecol Evol. 2016;31(4):315-26.

Sears ER. The aneuploids of common wheat. Bull. Mo. Agric. Exp. Sta. 1954;572:3-58.

Dizier M, Babron M, Clerget-Darpoux F. Conclusions of LOD-score analysis for family data generated under two-locus models. Am J Hum Genet. 1996;58:1338-46.

Malik HS, Henikoff S. Major evolutionary transitions in centromere complexity. Cell. 2009;138:1067-82.

Mutti JS , Bhullar RK, Gill KS. Evolution of gene expression balance among homeologs of natural polyploids. G3: Genes, Genomes, Genetics. 2017;7:1225-37.

Adams KL. Evolution of duplicate gene expression in polyploid and hybrid plants. J Hered. 2007;98:136-41.

McIntosh RA, Zhang P, Cowger C, Parks R, Lagudah ES, Hoxha S. Rye-derived powdery mildew resistance gene Pm8 in wheat is suppressed by the Pm3 locus. Theor Appl Genet. 2011;1123(3). 359-67.

Ma H, Singh RP, Mujeeb-Kazi A. Suppression/expression of resistance to stripe rust in synthetic hexaploid wheat (Triticum turgidum×T tauschii). Euphytica. 1995;83(2):87–93.

Vdovychenko Zh.V., Antonyuk M.Z., Ternovskaya T.К. Influence of gametocidal chromosome 4Sl on the segregation ratio in genetic analysis of common wheat lines. Tsitol Genet. 2003; 37(5):49–56.

Ternovska ТК, Iephimenko ТS, Antonyuk MZ, Martynenko VS. Genetic control of spike morphological characters in introgression common wheat lines. Achievements and Problems of Genetics, Breeding and Biotechnology, v. 3. Kyiv: Logos; 2012,p.175–80.

Chen ZJ , Yu HH. Genetic and epigenetic mechanisms for polyploidy and hybridity. In: Chen ZJ, Birchler JA, editors. Polyploid and hybrid genomics. New York: Wiley-Blackwell; 2013, p. 335-54.






Copyright (c) 2018 Tamara Ternovska, Tetiana Iefimenko, Anastasiia Navalihina, Maksym Аntonyuk

Creative Commons License
Ця робота ліцензована Creative Commons Attribution 4.0 International License.