Коінфекція патогенними штамами Escherichia coli та вірусом хвороби Гамборо в бройлерів

Автор(и)

  • Олексій Олександрович Нечипуренко Національний університет «Києво-Могилянська академія»; Інститут мікробіології і вірусології ім. Д. К. Заболотного НАН України, Україна https://orcid.org/0009-0008-5803-6723
  • Ірина Михайлівна Фуртат Національний університет «Києво-Могилянська академія», Україна https://orcid.org/0000-0003-0681-2889
  • Денис Вікторович Древаль ТОВ «Центр ветеринарної діагностики», Україна https://orcid.org/0009-0008-0416-9619
  • Лілія Василівна Авдєєва Інститут мікробіології і вірусології ім. Д. К. Заболотного НАН України, Україна https://orcid.org/0000-0002-8458-444X

DOI:

https://doi.org/10.18523/2617-4529.2026.9.22-29

Ключові слова:

вірус інфекційної бурсальної хвороби (IBDV), хвороба Гамборо, патогенна кишкова паличка птахів (APEC), коінфекція, колібактеріоз, антимікробна резистентність

Анотація

Мета. Дослідити роль патогенної для птахів E. coli в патологічному процесі під час коінфекції вірусом бурсальної хвороби в бройлерів. Методи. Дослідження проводили на одній з птахофабрик із закритим циклом вирощування протягом 42 днів. Для оцінювання патологічних змін проводили розтин загиблих курчат віком 21, 28, 35 і 42 дні та визначали ступінь ураження бурси на підставі результатів гістологічного дослідження. Ідентифікацію бактерій здійснювали із застосуванням API 20E тест-системи, з оцінюванням гемолізу. Чутливість виділених ізолятів E. coli до антибіотиків визначали за методом Кірбі – Бауера. Виділення та ідентифікацію вірусу хвороби Гамборо здійснювали за допомогою ЗТ-ПЛР та подальшого секвенування утворених фрагментів. Результати. Атрофія бурси спостерігалася з 21-го дня з подальшим зниженням рівня з 60 до 90 % на завершальному етапі дослідження. Крім того, штами APEC було виділено у птахів на 28–42-й день, що корелює з хронічною імуносупресією. Усі досліджені ізоляти E. coli виявилися резистентними до бета-лактамів (амоксицилін, амоксиклав), тетрациклінів і триметоприму, що підкреслює ризик розвитку штамів із множинною лікарською стійкістю. Стійкість до хінолонів (енрофлоксацин, ципрофлоксацин, флумеквін) було виявлено вже через 42 дні, що свідчить про швидкий розвиток перехресної резистентності за умови неконтрольованого застосування. Втім, найнижчі рівні стійкості спостерігали щодо колістину та флорфеніколу. Штами IBDV було виявлено в бурсі 21, 28 та 35 бройлерів з рівнем Ct 22,8; 25,8 та 32,2 бала відповідно, що свідчить про зниження вірусного навантаження. За результатами визначення часткових нуклеотидних послідовностей гена VP2 збудник був ідентифікований як дуже вірулентний вірус, а саме штам United Kingdom 2019. Однак аналіз зразків від 42-денних бройлерів засвідчив, що нуклеотидна послідовність належить до вакцинного штаму. Висновки. Коінфекція APEC та IBDV у бройлерних курчат посилює імуносупресію, створюючи умови для вторинних бактеріальних інфекцій. Схильність до колібактеріозу корелює зі стадією виснаження бурсальної сумки та може зберігатися навіть під час реплікації вакцинного штаму IBDV після первинного інфікування.

Біографії авторів

Олексій Олександрович Нечипуренко, Національний університет «Києво-Могилянська академія»; Інститут мікробіології і вірусології ім. Д. К. Заболотного НАН України

кандидат біологічних наук, старший викладач кафедри біології факультету природничих наук Національного університету «Києво-Могилянська академія» (НаУКМА), докторант відділу антибіотиків Інституту мікробіології і вірусології ім. Д. К. Заболотного НАН України, Київ, Україна

ne4upura@ukr.net

Ірина Михайлівна Фуртат, Національний університет «Києво-Могилянська академія»

кандидат біологічних наук, доцент кафедри біології факультету природничих наук Національного університету «Києво-Могилянська академія» (НаУКМА), Київ, Україна

furtat@ukma.edu.ua

Денис Вікторович Древаль, ТОВ «Центр ветеринарної діагностики»

магістр з ветеринарної медицини, завідувач відділу патанатомії та бактеріології ТОВ «Центр ветеринарної діагностики», Київ, Україна

dreval_denis@ukr.net

Лілія Василівна Авдєєва, Інститут мікробіології і вірусології ім. Д. К. Заболотного НАН України

доктор медичних наук, професор, завідувачка відділу антибіотиків Інституту мікробіології і вірусології ім. Д. К. Заболотного НАН України, Київ, Україна

avdeeva_liliya@imv.ukr.net

Посилання

  1. Li L, Kubasova T, Rychlik I, Hoerr FJ, Rautenschlein S. Infectious bursal disease virus infection leads to changes in the gut associated-lymphoid tissue and the microbiota composition. PLoS ONE. 2018;13(2):e0192066. doi: 10.1371/journal.pone.0192066
  2. Dey S, Pathak DC, Ramamurthy N, Maity HK, Chellappa MM. Infectious bursal disease virus in chickens: prevalence, impact, and management strategies. Vet Med (Auckl). 2019;5(10):85-97. doi: 10.2147/VMRR.S185159
  3. Orakpoghenor O, Oladele SB, Abdu PA. Infectious Bursal Disease: Transmission, Pathogenesis, Pathology and Control – An Overview. World’s Poultry Science Journal. 2020;76(1):1-12. doi: 10.1080/00439339.2020.1716652
  4. Hoerr FJ. Clinical aspects of immunosuppression in poultry. Avian Dis. 2010;54(1):2-15. doi: 10.1637/8909-043009-Review.1
  5. Wang W, Wu J, Jiang N, Liang Q, Liu R, Fu Q, Fu G, Wei T, Wan C, Cheng L, et al. Advances in Infectious Bursal Disease Virus Vaccines – a Review. Microorganisms. 2025;13:2801. doi: 10.3390/microorganisms13122801
  6. Srinivasan P, Rao GV, Titus VTK. Pathology of Escherichia coli and concurrent infection of IBDV with Escherichia coli in chicken. Indian Journal of Animal Sciences. 2002;72:967-70.
  7. Nawaz S, Wang Z, Zhang Y, Jia Y, Jiang W, Chen Z, Yin H, Huang C, Han X. Avian pathogenic Escherichia coli (APEC): current insights and future challenges. Poultry Science. 2024;103(12):104359. doi: 10.1016/j.psj.2024.104359
  8. Kamal O, Kneuper H, Cogan T, Woodward MJ. Avian Pathogenic Escherichia coli: Advances in Pathogenesis, Diagnosis, and Control. Veterinary Sciences. 2026;13(1):19. doi: 10.3390/vetsci13010019
  9. Hussein EA, Hair-Bejo M, Adamu L, Omar AR, Arshad SS, Awad EA, Aini I. Scoring system for lesions induced by different strains of Newcastle Disease virus in chicken. Vet Med Int. 2018;9296520:9. doi: 10.1155/2018/9296520
  10. Cazaban C, Swart WBF, Rietema RMW, Wit JJD, Palya V, Gardin Y. Field Assessment of an Immune-Complex Infectious Bursal Disease Vaccine in Chicks Born to Non-Hyperimmunized Broiler Breeders. J Vet Sci Ani Husb. 2018;6(3):302. doi: 10.15744/2348-9790.6.302
  11. Aguanta BN, Fuller AL, Milfort MC, Williams SM, Romdhane R, Aggrey S. Histologic Effects of Concurrent Heat Stress and Coccidial Infection on the Lymphoid Tissues of Broiler Chickens. Avian Diseases. 2018;62(4):345-50. doi: 10.1637/11907-052818-Reg.1
  12. Sanger F, Nicklen S, Coulson AR. DNA sequencing with chain-terminating inhibitors. Proc Natl Acad Sci USA. 1977;74(12):5463-7. doi: 10.1073/pnas.74.12.5463
  13. Nechypurenko O, Furtat I, Dreval D, Avdeeva L. Colibacillosis in broiler chicks and its etiological link to the biological characteristics of Escherichia coli isolates from the breeder flock. NaUKMA Research Papers. Biology and Ecology. 2025;8:45-54. doi: 10.18523/2617-4529.2025.8.45-54
  14. Fritsche TR, McDermott PF, Shryock TR, Walker RD. Agar dilution and disk diffusion susceptibility testing of Campylobacter spp. J Clin Microbiol. 2007;45:2758-59. doi: 10.1128/JCM.00569-07
  15. Nechypurenko O, Avdeeva L, Dreval D, Sobko I. Avian Pathogenic Escherichia coli and its Antibiotic Resistance. Mikrobiolohichnyi Zhurnal. 2024;86(5):61-74. doi: 10.15407/microbiolj86.05.061
  16. Pastyria AS, Budzanivska IG, Polischuk VP. Characterization of vaccine and field IBDV strains in Ukraine for proper vaccine selection for disease prevention. Biopolymers and Cell. 2018;34(1):24-31. doi: 10.7124/bc.00096D
  17. Nagy N, Busalt F, Halasy V, Kohn M, Schmieder S, Fejszak N, Kaspers B, Härtle S. In and Out of the Bursa–The Role of CXCR4 in Chicken B Cell Development. Front Immunol. 2020;11:1468. doi: 10.3389/fimmu.2020.01468
  18. Kaczmarek A, Skowron K, Budzyńska A, Grudlewska K, Gospodarek-Komkowska E. Virulence genes and antimicrobial susceptibility of lactose-negative and lactose-positive strains of Escherichia coli isolated from pregnant women and neonates. Folia Microbiol. 2017;62:363-71. doi: 10.1007/s12223-017-0506-y
  19. Saha O, M Hoque N, Kibria I, Rahaman M, Sultana M, Hossain AM. Multidrug-Resistant Avian Pathogenic Escherichia coli Strains and Association of Their Virulence Genes in Bangladesh. Microorganisms. 2020;8(8):1135. doi: 10.3390/microorganisms8081135
  20. Swinkels A, Fischer E, Korving L, Christodoulou R, Wagenaar J, Zomer A. Flumequine, a fluoroquinolone in disguise. NPJ Antimicrob Resist. 2024;2(1):28. doi: 10.1038/s44259-024-00044-5
  21. Tsai A, Uemura S, Johansson M, Puglisi E, Marshall A, Aitken C, Korlach J, Ehrenberg M, Puglisi J. The impact of aminoglycosides on the dynamics of translation elongation. Cell Rep. 2013;3(2):497-508. doi: 10.1016/j.celrep.2013.01.027
  22. Spencer A, Jurasitritthikun S, Subedi D. Characterization of antibiotic resistance and virulence in avian pathogenic Escherichia coli (APEC) from Australia. Sci Rep. 2024;14(1):22176. doi: 10.1038/s41598-024-73043-3
  23. Kathayat D, Lokesh D, Ranjan S, Rajashekara G. Avian Pathogenic Escherichia coli (APEC): An overview of virulence and pathogenesis factors, zoonotic potential, and control strategies. Pathogens. 2021;10(4):467. doi: 10.3390/pathogens10040467
  24. Vishwanatha S, Shridevi R, Bhat JA, Desai GS, Reddy PS, Tirumurugaan KG. Molecular characterization of very virulent infectious bursal disease virus (vvIBDV) from southern India: Evidence of genetic reassortment. Infect Genet Evol. 2018;62:208-215. doi: 10.1016/j.meegid.2018.04.018

##submission.downloads##

Опубліковано

2026-05-28

Як цитувати

1.
Нечипуренко ОО, Фуртат ІМ, Древаль ДВ, Авдєєва ЛВ. Коінфекція патогенними штамами Escherichia coli та вірусом хвороби Гамборо в бройлерів. NRPBE [інтернет]. 28, Травень 2026 [цит. за 31, Травень 2026];9:22-9. доступний у: https://nrpbe.ukma.edu.ua/article/view/362921