Оптимізація умов формування 3D-агрегатів для експансії та кардіоміогенного диференціювання індукованих плюрипотентних стовбурових клітин миші

Автор(и)

  • Галина Володимирівна Будаш Національний університет «Києво-Могилянська академія», Україна https://orcid.org/0000-0003-4717-3470
  • Денис Іванович Білько Національний університет «Києво-Могилянська академія», Україна https://orcid.org/0000-0001-6801-401X

DOI:

https://doi.org/10.18523/2617-4529.2026.9.80-88

Ключові слова:

іПСК, 3D-культура, клітинні агрегати, діаметр агрегатів, кардіоміоцити, диференціювання

Анотація

Контроль фізичних параметрів 3D-агрегатів індукованих плюрипотентних стовбурових клітин (іПСК), зокрема їхнього діаметра, є важливим фактором оптимізації процесів експансії та спрямованого диференціювання. У цій роботі досліджено вплив початкової щільності посіву клітин на формування агрегатів, їхній діаметр, морфологію, життєздатність та ефективність диференціювання в кардіоміоцити.
Показано наявність прямої залежності між початковою кількістю клітин та діаметром агрегатів, а також встановлено, що агрегати середнього розміру мають найбільш сприятливі біологічні властивості. Агрегати, сформовані з 500 клітин, мали оптимальний діаметр, високу однорідність та забезпечували найвищу ефективність кардіоміогенної диференціації. Менші агрегати мали недостатню ефективність диференціювання, тоді як більші агрегати демонстрували ознаки зниження життєздатності, що може бути пов’язано з обмеженням дифузії кисню та поживних речовин.
Отримані результати свідчать, що агрегати з діаметром у межах приблизно 150–300 мкм забезпечують оптимальні умови для міжклітинної сигналізації. Отже, контроль діаметра агрегатів є критично важливим параметром для підвищення ефективності диференціювання іПСК у кардіоміоцити та стандартизації 3D-культур.

Біографії авторів

Галина Володимирівна Будаш, Національний університет «Києво-Могилянська академія»

кандидат біологічних наук, старший викладач кафедри лабораторної діагностики біологічних систем Національного університету «Києво-Могилянська академія» (НаУКМА), Київ, Україна

Galyna.Budash@ukma.edu.ua

Денис Іванович Білько, Національний університет «Києво-Могилянська академія»

кандидат біологічних наук, доцент кафедри лабораторної діагностики біологічних систем Національного університету «Києво-Могилянська академія» (НаУКМА), Київ, Україна

denys.bilko@ukma.edu.ua

Посилання

  1. Takahashi K, Yamanaka S. Induction of pluripotent stem cells from mouse embryonic and adult fibroblast cultures by defined factors. Cell. 2006;126(4):663-76. doi: 10.1016/j.cell.2006.07.024
  2. Yu J, Vodyanik MA, Smuga-Otto K, Antosiewicz-Bourget J, Frane JL, Tian S, et al. Induced pluripotent stem cell lines derived from human somatic cells. Science. 2007;318(5858):1917-20. doi: 10.1126/science.1151526
  3. Aijaz A, Li M, Smith D, Khong D, LeBlon C, Fenton OS, et al. Bioprocessing strategies for stem cell-based therapeutics. Curr Opin Biomed Eng. 2018;10:74-81. doi: 10.1016/j.cobme.2018.11.001
  4. Edmondson R, Broglie JJ, Adcock AF, Yang L. Three-dimensional cell culture systems and their applications in drug discovery and cell-based biosensors. Assay Drug Dev Technol. 2014;12(4):207-18. doi: 10.1089/adt.2014.573
  5. Ravi M, Paramesh V, Kaviya SR, Anuradha E, Solomon FD. 3D cell culture systems: advantages and applications. J Cell Physiol. 2015;230(1):16-26. doi: 10.1002/jcp.24683
  6. Zuppinger C. 3D cardiac cell culture: a critical review of current technologies and applications. Front Cardiovasc Med. 2019;6:87. doi: 10.3389/fcvm.2019.00087
  7. Sart S, Tomasi RF, Amselem G, Baroud CN. Multiscale cytometry and regulation of 3D cell cultures. Biotechnol Adv. 2017;35(1):47-62. doi: 10.1016/j.biotechadv.2016.11.006
  8. Kinney MA, Hookway TA, Wang Y, McDevitt TC. Engineering three-dimensional stem cell morphogenesis for the development of tissue models and scalable regenerative therapeutics. Stem Cell Res. 2016;16(2):341-52. doi: 10.1016/j.scr.2016.01.013
  9. Correia C, Serra M, Espinha N, Sousa M, Brito C, Burkert K, et al. Combining hypoxia and 3D culture improves the therapeutic potential of human pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes. Stem Cell Rev Rep. 2018;14(6):847-59. doi: 10.1007/s12015-018-9845-z
  10. Van Winkle AP, Gates ID, Kallos MS. Mass transfer limitations in embryoid bodies during human embryonic stem cell differentiation. Tissue Eng Part A. 2012;18(7-8):807-16. doi: 10.1089/ten.TEA.2011.0397
  11. Bauwens CL, Peerani R, Niebruegge S, Woodhouse KA, Kumacheva E, Husain M, et al. Control of human embryonic stem cell colony and aggregate size heterogeneity influences differentiation trajectories. Stem Cells. 2008;26(9):2300-2310. doi: 10.1634/stemcells.2008-0293
  12. Branco MC, Poch CM, Figueiredo LM. Impact of embryoid body size on pluripotent stem cell differentiation. Biotechnol Bioeng. 2020;117(4):1212-22. doi: 10.1002/bit.27279
  13. Ungrin MD, Joshi C, Nica A, Bauwens C, Zandstra PW. Reproducible ultra-high throughput formation of multicellular aggregates from human pluripotent stem cells. Methods. 2018;101:11-20. doi: 10.1016/j.ymeth.2015.11.010
  14. Jiang X, Lian X, Wei K, et al. Maturation of pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes: challenges and strategies. Stem Cell Res Ther. 2024;15:354. doi: 10.1186/s13287-024-03961-4
  15. Nguyen DHT, Stapleton SC, Yang MT, Cha SS, Choi CK, Galie PA, et al. Biomimetic model to reconstitute angiogenic sprouting morphogenesis in vitro. J Vis Exp. 2016;(115):54308. doi: 10.3791/54308
  16. STEMCELL Technologies. AggreWell™400/800 microwell plates for standardized spheroid formation. Vancouver: STEMCELL Technologies; 2021.
  17. Kempf H, Andree B, Zweigerdt R. Scalable suspension culture of human pluripotent stem cells. Stem Cell Res. 2015;14(3):353-61. doi: 10.1016/j.scr.2015.02.001
  18. Hookway TA, Butts JC, Lee E, Tang H, McDevitt TC. Aggregate formation and suspension culture of human pluripotent stem cells and differentiated progeny. Stem Cell Res. 2016;17(3):581-9. doi: 10.1016/j.scr.2016.09.010
  19. Serra M, Brito C, Correia C, Alves PM. Process engineering of human pluripotent stem cells for clinical application. Trends Biotechnol. 2012;30(6):350-9. doi: 10.1016/j.tibtech.2012.03.003
  20. Hwang YS, Chung BG, Ortmann D, Hattori N, Moeller HC, Khademhosseini A. Microwell-mediated control of embryoid body size regulates embryonic stem cell fate. Biomaterials. 2009;30(27):499-507. doi: 10.1016/j.biomaterials.2009.04.026
  21. Kropp C, Kempf H, Halloin C, Robles-Diaz D, Franke A, Scheper T, et al. Impact of feeding strategies on scalable expansion of human pluripotent stem cells. Trends Biotechnol. 2017;35(6):514-27. doi: 10.1016/j.tibtech.2017.01.001

##submission.downloads##

Опубліковано

2026-05-28

Як цитувати

1.
Будаш ГВ, Білько ДІ. Оптимізація умов формування 3D-агрегатів для експансії та кардіоміогенного диференціювання індукованих плюрипотентних стовбурових клітин миші. NRPBE [інтернет]. 28, Травень 2026 [цит. за 31, Травень 2026];9:80-8. доступний у: https://nrpbe.ukma.edu.ua/article/view/363079